PRODUCT CLASSIFICATION
產(chǎn)品分類在發(fā)明蛋白質(zhì)印跡法(Western Blot)出現(xiàn)了30多年之后,這項技術仍然是獲取特定蛋白可靠鑒定的關鍵。許多近期涌現(xiàn)的產(chǎn)品利用各種方法來提高蛋白質(zhì)印跡實驗的可重復性、敏感性、定量性以及速度。
有三個人都被認為發(fā)展了蛋白質(zhì)的免疫印跡方法,但其中只有一人才算得上是“Western Blotting(蛋白質(zhì)印跡法)”的命名者,他就是當時在西雅圖哈欽森癌癥研究中心Bob Nowinski實驗室工作的W. Neal Burnette。“Western Blotting”的命名中暗含了Southern Blotting(Edwin Southern在1975年發(fā)明的一項技術,使用膠、尼龍膜和吸水紙去鑒定一個復雜個體中特定的DNA序列)、Northern Blotting(隨后發(fā)明出的相似策略,用于鑒定RNA)以及位于西海岸(West Coast)的Nowinski實驗室三者之意。
Burnette的技術成果直到1981年才得以發(fā)表。他回想起來,當時審稿人“特別”反對使用“Western blotting”這一名稱。但盡管如此,這個名稱還是沿襲了下來,而且蛋白質(zhì)印跡技術也成為了zui廣泛使用的免疫化學技術之一。
工作原理
蛋白質(zhì)印跡法的*步涉及到用凝膠電泳(Gelelectrophoresis)按照大小分離蛋白質(zhì),然后通過將膜置于膠上,將蛋白質(zhì)轉移到膜上(通常是硝酸纖維素膜或聚偏二氟乙烯膜),并在膜上加上若干片吸水紙,然后將這套堆層放在緩沖溶液中,這樣就能通過毛細管作用將蛋白質(zhì)向上拉拽到膜上。這也就是所謂的濕法或槽式轉印法。
另外兩項技術是干法和半干轉印法,這兩種方法比傳統(tǒng)的濕轉印法更快也更規(guī)整,但是對于高分子量蛋白質(zhì)而言,效率更低。對于半干轉印方法來說,膜和膠放置在被緩沖液浸泡過的濾紙層之間,將這些都夾在陰極和陽極之間,電流就能驅(qū)動蛋白質(zhì)轉移到膜上。三種方法中,干法轉印zui快,但轉印效率也zui低。
轉印結束后,膜被放在稀釋過的蛋白質(zhì)溶液中用來封閉非特異性的蛋白質(zhì)結合。然后將膜與一抗進行孵育、洗脫,再與標記了信號檢測探針的二抗進行孵育。
zui后一步是檢測,通常采用化學發(fā)光或者熒光方法。在化學發(fā)光檢測中,與酶交聯(lián)的二抗能夠與檢測抗原產(chǎn)生光發(fā)生反應,可以被膠片或成像裝置捕獲。而在熒光檢測中,抗體探針被熒光集團所標記。
熒光檢測方法的主要優(yōu)勢在于,它可以同時檢測多個蛋白質(zhì),并且其信號更加一致。因此與化學發(fā)光檢測相比,也更有利于量化研究。
不少制造蛋白質(zhì)印跡相關設備、軟件和消耗品的公司正在努力推動其中一些或所有步驟的自動化,期望能夠?qū)⑦@一實驗變得更加簡單有效。同時在實驗中加入了一些驗證點,讓研究人員能夠隨時監(jiān)測實驗進展,甚至重新打造整個過程??茖W家們尋求的是性、穩(wěn)健性和策略化,從而能夠幫助他們避免浪費寶貴的造價高昂的抗體。
加速免疫檢測過程
轉印、抗體孵育、上樣和洗脫步驟占據(jù)了蛋白質(zhì)印跡法實驗80%的時間,EMD Millipore公司“蛋白質(zhì)印跡法解決方案”產(chǎn)品Michele Hatler這樣介紹。
這家總部位于加州泰梅庫拉的公司推出的SNAP i.d. 2.0蛋白質(zhì)檢測系統(tǒng)加速了整個過程,使用真空裝置通過膜推入試劑,而不僅僅依賴于擴散作用。這樣就能將免疫檢測的時間從4小時縮短到30分鐘,Hatler表示。她解釋說:“我們真正致力于提高蛋白質(zhì)印跡工作流程的效率。我們?nèi)匀皇前凑諅鹘y(tǒng)的步驟走,只是加了一個真空裝置。”
Hatler指出,2.0版本是于2012年9月推出的,相比之前的版本有幾個方面的優(yōu)勢。它可以使用中等大小的凝膠(8.5×13.5厘米)和迷你凝膠(7.5×8.4厘米),之前則只能用迷你凝膠。
“這一設備很便宜,操作也很簡便,但切實提高了實驗效率,節(jié)省了實驗時間。” Hatler說。
伯樂公司(Bio-Rad)的Trans-Blot Turbo蛋白質(zhì)轉移系統(tǒng)是實驗臺面大小的儀器,能夠提供快速而的轉印。得益于新的轉印緩沖液配方,特殊的過濾材料和增強的電流強度(由一個集成電源調(diào)節(jié)),這一系統(tǒng)能夠在短至3分鐘的時間內(nèi)完成轉印,并且印跡結果能與槽式轉移相媲美。傳統(tǒng)的半干轉移系統(tǒng)需要15到60分鐘時間,而且通常無法提供高分子量蛋白質(zhì)轉移的有力結果。
增加驗證點以緩解憂慮
蛋白質(zhì)印跡法的高失敗率常常令人感到非常沮喪,尤其是你需要若干天來換取一個結果。“這是一項非常不穩(wěn)定的技術,”伯樂公司“蛋白質(zhì)印跡組”市場Ryan Short說,“我們對用戶調(diào)查時發(fā)現(xiàn),一半的用戶報告他們用此技術的失敗率至少是25%。”
Short還說:“幾乎沒有什么機會可以檢查實驗過程是否滿足期望。由此就產(chǎn)生了焦慮。我們正在引入可視驗證點的概念來增加信心和確定性。”
這家公司的標準和Mini-PROTEAN免染色預制膠,利用其ChemiDoc MP膠成像系統(tǒng),使得研究者可以快速觀測到他們的蛋白是否正確地載入到凝膠上,進而確證高質(zhì)量的蛋白質(zhì)轉移,便于決定是否應該轉向下一個步流程或是重新開始。ChemiDoc MP系統(tǒng)是為化學發(fā)光和多元熒光斑點成像技術所設計,能夠在個人電腦上用ImageLab軟件來操作。
這些驗證點“真的很有用”,在實驗室使用該系統(tǒng)的加州大學戴維斯分校助理教授Aldrin Gomes表示:“我們可以成像這些免染的凝膠,不用加入額外的染料,而且能夠快速判斷跑在膠上的樣品是否出現(xiàn)問題。我們還能在蛋白質(zhì)轉膜之后再去對凝膠成像,如果其中任何一個步驟出現(xiàn)問題,我們都可以在這一點上停止實驗進程。”
成像和軟件提高定量性
當許多科學家仍在使用膠片分析蛋白質(zhì)印跡時,世面上開始出現(xiàn)越來越多的寬范圍免膠片凝膠記錄成像系統(tǒng),這些系統(tǒng)可以用來成像并分析化學發(fā)光的印跡、熒光的印跡斑點或者同時檢測這兩種印跡。許多公司開始紛紛努力,爭相制造盡可能便捷的成像儀及其分析軟件。很多公司提供了按鍵式成像捕捉系統(tǒng),其大小可在實驗臺上操作。
Syngene公司于2012年4月推出了非常簡潔的一鍵操作系統(tǒng)PXi,分析化學發(fā)光和熒光印跡。該系統(tǒng)是基于該公司的G:BOX成像系統(tǒng),并配有GeneSys成像軟件。
2012年10月,賽默飛世爾公司(Thermo Fisher Scientific)推出了myECL成像儀,使用紫外和可見光透射法,專業(yè)的濾鏡和電荷耦合器件(CCD)攝影技術去捕獲和分析蛋白質(zhì)印跡以及蛋白和核酸凝膠。
CCD照相機的靈敏度比X射線膠片高兩倍,據(jù)該公司介紹,該儀器的動態(tài)范圍高達10倍。用戶只需簡單地按下觸摸屏上其中一個*預設按鈕,無需調(diào)焦或調(diào)節(jié)照相機的設置。用戶也可以設置定制曝光,并可同時設置多達5個不同的曝光,或者使用預設的曝光參數(shù)。這臺成像儀占用的儀器空間很小,可以在實驗臺上使用。
Aplegen公司的Omega Lum G凝膠記錄系統(tǒng)也具有自動聚焦的特點,可以在實驗臺上操作,并配備了一臺整合的平板電腦。UVP公司在2012年1月推出了Chemi-Doc-It TS2成像儀,其特色在于整合的電腦和觸摸屏,允許用戶調(diào)節(jié)曝光、光圈、放大縮小和焦距等參數(shù),當用戶按下實時預覽(Live Preview)按鈕時,還能提供圖像實例。
LI-COR公司的紅外成像系統(tǒng)版本是Odyssey CLx,該版本具有超過6對數(shù)的動態(tài)范圍,而前一個版本只具有超過4對數(shù)的動態(tài)范圍。當對蛋白質(zhì)印跡結果進行解析時,這一增大的范圍能消除飽和度,提供了更寬的線性范圍可以轉換為定量數(shù)據(jù)。
“研究者在他們的印跡中不僅不會達到飽和,而且他們還可以將多重印跡結果放進成像儀中,根本無須擔心為這些印跡進行不同的設置調(diào)整。”位于林肯市的Nebraska公司產(chǎn)品市場Jeff Harford解釋說。
Rehana Leak是位于匹茲堡的美國迪尤肯大學(Duquesne University)的助理教授,她使用LI-COR的Odyssey CLx系統(tǒng)進行細胞如何適應低水平脅迫的研究。“Odyssey成像儀的優(yōu)勢在于它是16位的成像儀,并且具有700和800納米兩個紅外波長,一次能夠成像兩個斑點。” Leak說,“這意味著我們可以一起檢測磷酸化和全部構象的蛋白。”兩個蛋白亞型通過其他方法很難進行同步區(qū)分,因為它們的基團非常相似。
Leak指出,Odyssey成像儀能夠可視化216個紅外線信號暗影,與之相比,X射線膠片只能灰度的呈現(xiàn)150個暗影。“這將從150個躍遷到65000個紅外暗影,因此這種方法可以獲取更高的分辨率。”她接著說,“這是不同尋常的定量化。”
2012年12月,LI-COR公布了一套新的數(shù)字成像系統(tǒng),即C-DiGit系統(tǒng),能夠用于化學發(fā)光印跡。該系統(tǒng)將于2013年推出。“就像zui近這些年數(shù)碼照相機取代膠片相機一樣,我們認為C-DiGit系統(tǒng)必將替代膠片化學發(fā)光。” LI-COR資深科學家Jon Anderson說,“這項技術能提供膠片用戶所習慣的所有靈敏度和圖像質(zhì)量,同時顯著提升了數(shù)字圖像的質(zhì)量。”
軟件始終保持直觀
傳統(tǒng)的軟件分析蛋白質(zhì)印跡時需要用戶從圖像向電子表格導出數(shù)據(jù),而后續(xù)的均一化計算和分析都由手動完成。BioRad于2012年9月發(fā)布的Image Lab 4.1軟件,針對看家蛋白或總上樣蛋白提供嵌入式、自動化的均一化。
“這是目前我在市面上見到的的產(chǎn)品之一。”Gomes說,他正在研究蛋白酶體和肌鈣蛋白在心臟和骨骼肌組織中的作用。“的一點是,它是*免費的。”Image Lab 4.1軟件比他之前在實驗室用過的圖像分析軟件都要簡便,Gomes接著說,幾乎每個人都能掌握。“這的確增強了我們定量蛋白質(zhì)的方法。”
LI-COR公司也已經(jīng)推出了新的成像軟件——Image Studio,能與其Odyssey系統(tǒng)一起使用。用戶只需選擇一個檢測通道,然后按一個按鈕就能獲得一張圖像。這個軟件的新版本提供毫米間隔的分析,而不是厘米間隔的,同時又能夠執(zhí)行*的自動和手動分析。
重新打造蛋白質(zhì)印跡
除了對傳統(tǒng)的蛋白質(zhì)印跡技術進行微調(diào),ProteinSimple公司的Simple Western系統(tǒng)對其進行了重新開發(fā),用毛細管電泳使整個過程*自動化。在2011年,該公司推出了Simon,計劃使用該儀器全面取代蛋白質(zhì)印跡法。Simon能夠基于大小進行分離、免疫檢測、洗滌、化學發(fā)光檢測和定量分析??茖W家們僅需要加上樣品,然后離開,稍后回來就能得到*分析好的數(shù)據(jù)。Simon甚至能夠發(fā)出蜂鳴聲告知用戶結果出來了。
該公司緊接著在2012年初推出了Sally,該儀器允許用戶在一次實驗中進行96個Simple Western。而的設備則是2012年9月推出的Peggy,能夠一次分析96個樣品,并能按照尺寸或電荷分離蛋白。Simple Western克服了傳統(tǒng)蛋白質(zhì)印跡法中手動部分的缺陷,比方說缺少重復性或定量化結果。此外,在傳統(tǒng)蛋白質(zhì)印跡法中,多重檢測已經(jīng)成為一種挑戰(zhàn)。研究者現(xiàn)在可以利用熒光去觀測一個樣品中的2個或3個蛋白質(zhì),轉移的設備可以一次同時跑8塊迷你膠或4塊中等大小的膠,但這已經(jīng)是傳統(tǒng)蛋白質(zhì)印跡法所能達到的極限。Simple Western能夠在每個毛細管中多重分析蛋白質(zhì),從而在本質(zhì)上消除傳統(tǒng)蛋白質(zhì)印跡法的限制。
對于斯坦福大學醫(yī)學院的腫瘤學教師Alice Fan來說,Simple Western技術zui令人興奮的事情在于它分析顯微級別樣品的能力。
Fan收集樣本組織樣本的時間已經(jīng)超過10年,她一直在等待那個能夠讓她分析腫瘤細胞蛋白質(zhì)組的工具,而且還無需用去整個樣品。“我找尋了多年,希望有一個設備能夠用極少量的組織進行蛋白質(zhì)印跡。”她解釋說。
除了幫助她保存之前儲存的組織之外,Sally還讓Fan可以使用細針穿刺法多次從樣本身體中提取一些樣本,而不是做全面的活體檢視。Fan希望,這將能夠幫助她實時觀測樣本的腫瘤對藥物產(chǎn)生的反應。“在描述不同類型的腫瘤方面,這真的對我的研究大有裨益。這是巨大的進步。”
默克公司(Merck & Co)疫苗生物化學團隊負責人Richard Rustandi在2011年底購入了一臺Simon儀器。當時,他并沒有抱有很高的期待。但是,他說,他得到了意外的驚喜。“這臺儀器太棒了,我們在幾個月后又買了一臺。”
據(jù)Rustandi介紹,盡管Simon并不是無瑕的,但它能夠真正實現(xiàn)定量化。他接著說,手動的蛋白質(zhì)印跡法通常具有35%到45%的變異率,但他和他的實驗室能夠?qū)imon的變異率控制在10%以下。
隨著蛋白質(zhì)印跡技術地不斷演化,研究者zui終不用像保姆一樣,花費大量的時間照看著他們的實驗。“他們的時間非常重要。” Simple Western的產(chǎn)品Peter Fung認為,“你的時間利用率越高,就越能做出好的研究。”
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